HE染色伊紅著色淡分析及應對原因：（1）伊紅染液的pH值可能大于5；（2）藍化液殘留過多；（3）切片太薄；（4）切片經伊紅染色后在乙醇脫水時間過長。對策：檢查伊紅染液的pH值，如果必要的話，用乙酸將其調節在4～5之間，從而使伊紅染色彩艷麗。確保每次藍化步驟完成后，使用的弱堿性溶液被充分洗去，玻片上沒有殘留的弱堿性溶液。檢查切片的厚度。脫水時不要讓切片在低濃度乙醇停留時間過長，因為含水多的低濃度乙醇會將伊紅的顏色分化掉。HE染色是組織學、病理學教學與科研中比較基礎、使用比較普遍的技術方法之一。江蘇比較好的HE染色多少錢

HE染色不管怎么操作，始終無法染色或淡染答：這種情況一般因為組織固定時采用了酸性甲醛;或者組織在甲醛中浸泡時間太長;或者久置的甲醛變性分解為甲酸。補救：防患于未然，要么使用新鮮的中性甲醛固定，要么在存放的甲醛中加一點碳酸鈉中和甲酸。對于已經固定的組織可考慮再次固定；對于已經制出的片子，染色前采用5%重鉻酸鉀溶液浸泡半小時以上，然后自來水漂洗5min，可改善染色。也可以將切片放入3%硫酸鐵銨溶液中，補充染色媒介，增強蘇木素與組織的親和力(蘇木素染色必須要媒介才能染上，單純的蘇木素與組織的親和力很弱)。江西比較好的HE染色報告骨組織HE染色的操作流程。

HE染色切片中出現類似色素樣的點狀結晶和黑色光滑的細胞核原因：切片封片前放置在空氣中時間太長，以至于二甲苯揮發切片干燥所致。對策：移去組織切片上的蓋玻片和封固劑，重新處理。將切片水洗數分鐘，然后重新脫水、透明、封固。封片過程中要保持組織切片的輕度濕潤，盡量不要讓其干燥。細胞核呈紅、棕色改變原因：蘇木精染色液過度氧化和切片在蘇木精染液染色后返藍不足。對策：首先，每次染色之前檢查蘇木精染色液的染色能力，發現氧化過度應及時更換。其次，可用流水、溫水或弱堿性溶液如稀氨水、0.2%碳酸氫鈉等，在蘇木精染色后，給切片以足夠的藍化時間。

HE染色觀察細胞凋亡，凋亡檢測中形態學方法是**直觀、可靠的方法之一。對組織和各種細胞進行染色后，在光學顯微鏡、熒光顯微鏡或電子顯微鏡下觀察，通過觀察細胞的形態或染色的類型來判斷凋亡的發生與否。細胞涂片或細胞甩片的制備：對于貼壁細胞，可將蓋玻片放于培養器皿中，讓培養細胞長于玻片上，然后用藥物誘導細胞凋亡后取出，用4%多聚甲醛固定5min。對于懸浮細胞，用藥物誘導細胞凋亡后，離心1000r/min收集細胞，用PBS洗2次，收集調整細胞數為1X105/ml，涂片或用離心甩片，用4%多聚甲醛固定5min；在光學顯微鏡下，貼壁細胞由原來的梭形或多角形變小、變圓，核呈藍色或藍黑色，胞漿呈淡紅色，核固縮、破碎，形成凋亡小體等。懸浮細胞，整個細胞皺縮，核固縮，破碎，形成凋亡小體，染色質顏色加深等。常規HE染色和特殊染色服務。

HE染色原理：易于被堿性或酸性染料著色的性質稱為嗜堿性(basophilia)和嗜酸性(acidophilia)；而對堿性染料和酸性染料親和力都比較弱的現象稱為中性（neutrophilia)。構成組織內蛋白質的氨基酸的種類很多，它們有不同的等電點。在普通染色法中，染色液的酸堿度為pH6左右，細胞內的酸性物質如細胞核的染色質、腺細胞和神經細胞內的粗面內質網及透明軟骨基質等均被堿性染料染色，這些物質稱為嗜堿性。而細胞質中的其它蛋白質如紅細胞中的血紅蛋白、嗜酸粒細胞的顆粒及膠原纖維和肌纖維等被酸性染料染色，這些物質稱為嗜酸型。如果改變染色液的酸堿度，pH值升高時，則原來被酸性染料染色的物質可變為嗜堿性；pH值降低時，原來被堿性染料染色的物質則可變為嗜酸性。所以說染色液的pH值可以影響染色的反應。脫氧核糖核酸（DNA）兩條鏈上的磷酸基向外，帶負電荷，呈酸性，很容易與帶正電荷的蘇木精堿性染料以離子鍵結合而被染色。蘇木精在堿性溶液中呈藍色，所以細胞核被染成藍色。石蠟組織切片的HE染色。江蘇HE染色哪家好

HE染色試驗技術及注意事項。江蘇比較好的HE染色多少錢

HE染色在**染色中的應用，小細胞肺*是肺*中分化程度比較低、惡性程度比較高的一種惡性**，生長迅速，轉移較早，五年存活率*為1%-2%，預后非常差。其小細胞肺***細胞HE染色的特征，主要表現為組織結構，包括巢狀、小梁狀、實性片狀，常有菊形團形成，*巢周圍的瘤細胞呈柵欄狀排列，*細胞較小，一般小于三個靜止的淋巴細胞，呈圓形、卵圓形或短梭形，胞質稀少，胞界不清，核染色質呈細顆粒狀，核仁缺乏或不明顯，核分裂象每十個高倍視野大于十一個，常見大片狀壞死。江蘇比較好的HE染色多少錢