抗體篩選芯片的高效正交配對方案：抗體篩選芯片通過預埋式微陣列設計，在單通道內集成3×7或4×5抗體點陣（直徑200微米），支持18-21種抗體的同步測試。以IL-6抗體篩選為例，8種捕獲抗體與8種標記抗體在芯片上形成64種組合，通過熒光信號強度（信噪比>10）與交叉反應性分析（背景信號<5%），可在1小時內篩選出比較好配對組合（親和力KD≤1nM）。該技術耗樣量*需5μL，特別適用于珍稀樣本（如嬰幼兒血液或腦脊液）的高通量篩選。在新藥開發中，芯片可一次性測試數百種抗體對，結合機器學習算法（如隨機森林模型），預測候選抗體的特異性與穩定性，將傳統數周的篩選周期壓縮至24小時，研發成本降低70%。此外，芯片支持多條件優化（如pH梯度、離子強度），為診斷試劑盒的工藝開發提供全流程驗證平臺。芯棄疾JX-8B數字ELISA，低成本單分子檢測；單分子蛋白數字ELISA檢測用時

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每個生物實驗室都用得起的單分子免疫檢測

珠子以兩種不同的方式讀出。首先，在與100μMresorufin-阝-D孵育1小時后，用熒光板讀出器以100μL方式讀出珠子結合-半乳糖苷（RGP），一種熒光底物for阝-半乳糖苷酶。在平板閱讀器上，檢測限為15fMofS阝G（圖2）。其次，將珠子加載然后將RGP溶液密封到陣列的孔中，單個酶的信號被允許在反應室中積累，并每30秒獲取一次熒光圖像。實驗結束時獲取陣列的白光圖像以識別含有珠子的孔（含有珠子的孔散射光與空井不同）。熒光圖像用于確定哪些微球具有相關的結合酶（從時間變化的熒光圖像中強度增加）。圖2顯示了微球中含酶的比例與總體S阝G濃度的關系的對數-對數圖。檢測到的比較低酶偶聯物濃度為350飛摩爾（zM），并通過外推信號等于的酶濃度計算得出的檢測限（LOD）。 單分子蛋白數字ELISA檢測用時超多重檢測芯片亞 pg 級靈敏度，5μl 微量進樣，適合房水、眼淚等微量樣本檢測。

微量樣本檢測的臨床場景拓展：數字ELISA芯片的微量樣本檢測能力，開辟了傳統方法難以觸及的臨床場景。在眼科疾病中，*需2μl房水即可檢測VEGF等新生血管因子，為濕性年齡相關性黃斑變性的早期干預提供依據；在新生兒篩查中，5μl足跟血可同時檢測多種遺傳代謝病標志物，避免多次**對嬰兒的傷害。針對惡性**患者化療后的免疫功能評估，芯片可從10μl外周血中提取循環腫瘤細胞裂解液，檢測低豐度細胞因子，實時監控***反應。這種“微量高效”的檢測特性，使芯片成為罕見病診斷、兒科醫療、**精細醫療等領域的**工具，推動檢驗醫學向個體化、微創化方向發展。

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單分子的檢測原理：由Simoa數字免疫分析法實現的超靈敏度已在先前討論過。簡而言之，類似免疫分析中的酶-底物反應是在相對較大的反應體積（50-100μL）中進行的，在信號生成步驟中稀釋了產物分子。信號分子的擴散和稀釋將靈敏度限制在皮摩爾范圍內。相比之下，Simoa通過將單獨標記的免疫復合物和底物限制在飛升大小的孔中，從而限制了熒光產物分子從酶-底物反應中的擴散。當單一酶標簽催化底物轉化為熒光產物時，產生的熒光團被限制在孔中，從而在短時間內產生可測量的熒光信號。抗體篩選芯片單通道預設 18-21 個抗體檢測區，288-336 測試 / 小時，5μl 吸樣適配珍稀樣本。

創新性的解決方案：芯棄疾JX-8B數字ELISA；使用新型 的fg級超敏免疫檢測simoa單分子產品原理；

它是一種DVD大小的圓盤，由24個陣列組成，每個陣列包含240微米大小的微孔，這些微孔呈徑向排列，以便使用藍光制造工藝和儀器內的液體處理并行處理。圖2B顯示了集成陣列及其相關流體通道的設計。每個陣列由216,000個40飛升大小的微孔組成，以六邊形緊密排列模式排列在平面表面的3×4毫米區域內。每個微孔的標稱尺寸為4.25μm直徑、3.25μm深度和8μ米中心間距。流體通道深0.5毫米，通道和流體入口端口的總體積為74μLto，可容納珠子和密封油溶液。通道中包含一個收縮部分以減少液體回流。微珠的分級是西莫亞技術的關鍵要求，微孔的幾何形狀足以容納單個微珠（2.7μmdiameter；以下簡稱珠子）。西莫亞圓盤由環烯烴共聚物（COP）制造，因其具有高通量注塑成型的適應性，且成本低廉。具有良好的化學、生物和光學性能 全自動加樣與圖像分析系統實現檢測流程自動化，熒光信號識別，結果可靠。哪些是數字ELISA極速檢測

6）數字化高敏ELISA芯片試劑盒，10ul樣本可同時測2-4個指標；單分子蛋白數字ELISA檢測用時

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從TNF-α數字ELISA測定的檢測限為~150aM（2.5fg/mL），相當于全血中的~600aM（10fg/mL）；市場上可用的ELISA對TNF-α的比較高靈敏度在血清中的LOD為21fM(0.34pg/mL）（補充圖3）。兩種方法的目標蛋白零濃度尖峰均為為這些實驗提供有用的陰性對照：25%的血清含有多種蛋白質的微摩爾濃度，在這些高蛋白質背景之上可以檢測到非常低濃度的目標蛋白。我們還開發了一個證明用于顯示低濃度核酸可以檢測到的DNA的主要數字分析方法，而無需復制目標

單分子蛋白數字ELISA檢測用時