免疫組化，全稱為免疫組織化學技術（Immunohistochemistry），是結合了免疫學與組織化學原理的一種檢測技術。它利用抗原與抗體之間特異性的相互作用，通過將標記（如熒光素、酶標記）的特異性抗體應用于組織或細胞切片上，來識別和定位組織或細胞內的目標抗原，如蛋白質或多肽。這一過程不 能夠顯示出目標分子在細胞或組織中的分布情況，還能對其進行定性、定量分析，甚至達到亞細胞結構的分辨率。免疫組化技術是病理學、生物醫學研究中不可或缺的工具，對于疾病的診斷、了解疾病發生機制、指導臨床醫療方案（尤其是Tumor學領域）具有重要意義。優化的抗原修復步驟能明顯提升免疫組化染色的敏感性和特異性。溫州多重免疫組化

免疫組化鏡檢：在進行鏡檢前可以通過相關的資料進行查詢，進行指導檢查到抗體的表達部位有細胞間質、細胞膜、細胞漿、核膜、細胞核以及在其中的多個部位表達（如：MPO抗體表達在細胞膜、細胞漿、核膜、細胞核上）和表達組織（如：VWF抗體在血管壁上表達，呈現環形）。實際操作過程中，在顯微鏡下觀察時，先在4倍鏡下查找組織及其范圍，然后查看整個組織確定陽性產物的表達部位，然后將陽性產物表達部位置于視野正中，換高倍鏡觀察。惠州組織芯片免疫組化掃描通過熒光或酶標記的二抗，免疫組化在顯微鏡下直觀展示細胞內蛋白分布。

免疫組化實驗中的背景染色問題可以通過以下幾種方式減少：1、優化抗體選擇：選擇特異性高、交叉反應少的抗體，這可以有效降低非特異性結合，減少背景染色。2、調整抗體濃度：過高的抗體濃度可能導致非特異性結合增多，因此適當降低抗體濃度可以減少背景染色。3、縮短孵育時間：長時間孵育可能導致抗體與非特異性位點的結合增加，適當縮短孵育時間有助于減少背景染色。4、使用阻斷劑：在染色前使用阻斷劑，如牛血清白蛋白（BSA）、魚膠原蛋白（Gelatin）等，可以阻斷非特異性結合位點，降低背景染色。5、優化組織處理：對組織進行適當的固定和脫水處理，可以減少組織中的干擾物質，降低背景染色。6、優化實驗條件：保持實驗條件的一致性，如溫度、pH值等，可以減少實驗誤差，降低背景染色的可能性。7、增加陰性對照：在實驗中增加陰性對照，有助于識別并區分非特異性染色，從而降低背景染色的影響。

免疫組化技術，是應用免疫學基本原理—抗原抗體反應，即抗原與抗體特異性結合的原理，通過化學反應使標記抗體的顯色劑（熒光素、酶、金屬離子、同位素）顯色來確定組織細胞內抗原（多肽和蛋白質），對其進行定位、定性及定量的研究，稱為免疫組織化學技術（immunohistochemistry）或免疫細胞化學技術（immunocytochemistry），是研究蛋白質在組織細胞中分布、功能狀態及動態變化的強有力工具。免疫組化技術具有高靈敏度、高選擇性和無放射性污染的特點，其結果容易數字化和圖像處理，是一種實用性和準確性高的分子生物學技術。在臨床醫學研究中，免疫組化被廣泛應用于Ca組織結構及特異性結構物的鑒定，幫助醫生確定病變的類型、分級和分期，進一步指導臨床醫療和預后判斷。免疫組化的操作步驟有哪些？

免疫組織化學染色方法：1、按標記物質的種類，如熒光染料、放射性同位素、酶(主要有辣根過氧化物酶和堿性磷酸酶)、鐵蛋白、膠體金等可分為免疫熒光法、放射免疫法、酶標法和免疫金銀法等。2、按染色步驟可分為直接法(又稱一步法)和間接法(二步、三步或多步法);與直接法相比，間接法的靈敏度提高了許多。3、按結合方式可分為抗原一抗體結合，如過氧化物酶-抗過氧化物酶法和親和連接，如卵白素-生物素-過氧化物酶復合物(ABC)法、鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶連結(SP)法等，其中SP法是常用的方法。免疫組化的結果判讀需要注意那些細節？珠海免疫組化原理

免疫組化技術不僅能用于基礎研究，也是臨床病理診斷不可或缺的方法之一。溫州多重免疫組化

免疫組化SP三步法的具體實驗流程步驟簡介：1、石蠟切片，常規脫蠟至水；2、0.3%或3%H2O2去離子水（無色液體）孵育10-30分鐘，以滅活內源性過氧化物酶活性；3、蒸餾水沖洗，PBS浸泡5分鐘；4、候選步驟：采用抗原修復：微波（建議30分鐘內4次中火）、高壓、酶修復方法。自然冷卻，再用3分鐘×3次；5、血清封閉：室溫15-30分鐘，盡可能與二抗來源一致。傾去，勿洗；6、滴加適當比例稀釋的一抗，37℃孵育2~3小時或4℃過夜。PBS沖洗，3分鐘×5次；7、滴加生物素標記的二抗，室溫或37℃孵育30分鐘-1h；8、BS沖洗，3分鐘×5次；9、滴加SP（鏈霉親和素-過氧化物酶），室溫或37℃孵育30分鐘-1h；0、PBS沖洗，3分鐘×5次；11、顯色劑顯色（DAB等）；12、自來水充分沖洗；13、可進行復染，脫水，透明；14、選擇適當的封片劑封片。溫州多重免疫組化