細胞的固定及免疫熒光：1)吸除培養基，一般先加入PBS浸洗細胞 3 次，每次 5 min。2)向孔內加入4%多聚甲醛1ml，進行細胞固定，室溫固定20分鐘。3)吸去多聚甲醛，使用PBS浸洗 3 次，每次 5 min。4)向孔內加入0.5%Triton X-100(PBS配制)室溫通透20min，目的是使細胞通透。5) 除去Triton X-100，使用PBS浸洗 3 次，每次 5 min。6)用10%的與二抗同源的山羊血清(PBS配制)或者5%BSA封閉2小時（選擇的封閉液與后面操作過程中抗體稀釋液一致）。封閉后不需要用PBS清洗。7)吸去封閉液，向每孔滴加足夠量適宜濃度的一抗（一次使用抗體可以根據抗體說明書推薦濃度，后續實驗可以摸索抗體的適宜濃度），4℃濕盒內孵育過夜。免疫熒光技術可以用于研究遺傳疾病和基因表達調控。synaptophysin免疫熒光染色

熒光色素：異硫氰酸熒光素（fluoresceinisothiocyanate，FITC）為黃色或橙黃色結晶粉末，易溶于水或酒精等溶劑。分子量為389.4，較大吸收光波長為490495nm，較大發射光波長520530nm，呈現明亮的黃綠色熒光，結構式如下：有兩種同分異結構，其中異構體Ⅰ型在效率、穩定性、與蛋白質結合能力等方面都更好，在冷暗干燥處可保存多年，是應用較普遍的熒光素。其主要優點是：①人眼對黃綠色較為敏感，②通常切片標本中的綠色熒光少于紅色。四乙基羅丹明（rhodamine，RIB200）為橘紅色粉末，不溶于水，易溶于酒精。性質穩定，可長期保存。結構式如下：較大吸收光波長為570nm，較大發射光波長為595～600nm，呈橘紅色熒光。synaptophysin免疫熒光染色熒光抗體法和熒光抗原法都屬于免疫熒光技術的范疇。

免疫熒光間接法測抗體實驗注意事項：1）熒光染色后一般在1h內完成觀察，或于4℃保存4h，時間過長，會使熒光減弱。2）每次試驗時，需設置以下三種對照：①陽性對照：陽性血清+熒光標記物②陰性對照：陰性血清+熒光標記物③熒光標記物對照：PBS+熒光標記物3.已知抗原標本片需在操作的各個步驟中，始終保持濕潤，避免干燥。4.所滴加的待檢抗體標本或熒光標記物，應始終保持在已知抗原標本片上，避免因放置不平使液體流失，從而造成非特異性熒光染色。

免疫熒光-實驗步驟：細胞爬片免疫熒光：在培養板中將已爬好細胞的玻片用PBS浸洗3次,每次5min;（圓蓋片：13mm24孔；18mm12孔；20mm6孔）用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻片3次,每次5min0.5%TritonX-100(PBS配制)室溫通透20min(細胞膜上表達的抗原省略此步驟);PBS浸洗玻片3次,每次3min,吸水紙吸干PBS,在玻片上滴加3%的BSA（PBS配置）,室溫封閉30min5,吸水紙吸掉封閉液,不洗,每張玻片滴加足夠量用PBS稀釋好的一抗并放入濕盒,4℃孵育過夜。加熒光二抗:PBS浸洗爬片3次,每次5min,吸水紙吸干爬片上多余液體后滴加稀釋好的熒光二抗,濕盒中室溫孵育50min。使用已知熒光抗原標記物質來檢查相應抗體的方法被稱為熒光抗原技術。

熒光抗體技術：抗原抗體反應后，利用熒光顯微鏡判定結果的檢測方法。免疫熒光測定：抗原抗體反應后，利用特殊儀器測定熒光強度而推算被測物濃度的檢測方法。免疫熒光實驗步驟：直接法測抗原：基本原理：將熒光素標記在相應的抗體上，直接與相應抗原反應。其優點是方法簡便、特異性高，非特異性熒光染色少。缺點是敏感性偏低；而且每檢查一種抗原就需要制備一種熒光抗體。此法常用于細菌、病毒等微生物的快速檢查和腎炎活檢、皮膚活檢的免疫病理檢查。免疫熒光技術利用熒光染料標記的抗體與目標分子結合，從而實現可視化檢測。synaptophysin免疫熒光染色

免疫熒光技術通過熒光信號的觀察來確定抗原或抗體的分布和定位。synaptophysin免疫熒光染色

細胞免疫熒光實驗注意事項：非特異性染色：是否滅活內源性過氧化物酶；孵育過程中干片；抗原熱修復過度。染色過深：一抗濃度過高；染色試濃度過高或孵育時間過長；染色劑濃度過高或孵育時間過長。通常實驗室先固定細胞再進行通透，但若檢測抗原是水不溶性蛋白，可先通透再固定，這樣可以通過通透去除一些水溶性蛋白，進而可降低免疫熒光背景和非特異性信號；建議設陰性對照組，消除由于抗體非特異性結合而產生的背景染色；選擇醛類固定液時，保持其新鮮度，較好現配現用，使用不新鮮的醛類固定液自發熒光背景會升高。synaptophysin免疫熒光染色