對細胞活力的影響：一些研究表明，在陽離子脂質體LipofectamineTM2000介導下雞TRPV6基因RNA干擾（RNAi）質粒轉染入成骨細胞的實驗中，當轉染前細胞融合達到90％以上，質粒DNA與脂質體比例為1:2.5時轉染效率比較高，并且在轉染后48h轉染效果比較好，對細胞的毒性作用較小3。在人肝瘤兩種細胞模型中，通過比較LipofectamineRnaimax和Genmute轉染劑發現，用基因***的細胞呈現熒光陰性對照siRNA的更高攝取，并且觀察到與基因轉染的細胞相對于脂質積rnaimax的細胞具有較高的活力6。有研究使用兩種常見的RNA干擾（RNAi）轉染試劑DharmaFECT1和INTERFERin，在模擬轉染中使用非靶向siRNAs，結果表明這些試劑會引起HeLa細胞脂質組的變化，但功能影響仍有待研究，這也暗示在RNAi實驗中使用適當的模擬轉染對照非常重要。
與DNA轉染類似，RNA可以通過基于RNA的病毒或非病毒載體導入真核細胞。青海轉染試劑檢測
聯合使用其他技術優化DNA和RNA轉移的轉染試劑在肌肉細胞中的應用：在C2C12細胞中，比較了五種商業轉染試劑（Lipofectamine®3000、Viafect?、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®）的轉染效率7。通過優化DNA:轉染劑比例和細胞密度，所有試劑都達到了超過60%的轉染效率，且對細胞生長和活力的影響有限。然而，在C2C12細胞中優化的用于DNA轉移的條件下，這些試劑對siRNA的轉移效率較低，并且對原代肌肉細胞的毒性較高。這提示在使用轉染試劑時，可以通過聯合使用其他技術或優化轉染條件，以提高轉染效率并降低細胞死亡。例如，可以進一步研究不同試劑之間的聯合使用，或者優化轉染后的培養條件，以降低細胞毒性。綜上所述，在不同細胞模型中提高RNA轉染試劑的轉染效率同時降低細胞死亡，可以通過選擇合適的轉染試劑、優化轉染條件以及聯合使用其他技術等方法來實現。未來的研究可以進一步深入探討不同細胞模型中比較好的轉染策略，以滿足不同研究領域的需求。西藏轉染試劑好用納米顆粒可以參與內體途徑，并可以通過細胞質將DNA運輸到細胞核。
X射線發光成像技術結合了X射線成像的高空間分辨率和光學成像的高測量靈敏度，可用于小動物成像。小動物的X射線發光成像：MichaelCLun、WenxiangCong和Md.Arifuzzaman綜述了兩種類型的X射線發光計算斷層掃描（XLCT）成像方法，并介紹了他們正在建立的聚焦X射線發光斷層掃描（FXLT）成像系統7。該系統將開發基于機器學習的FXLT重建算法，并合成不同發射波長的納米級磷光劑。四、近紅外高光譜成像技術近紅外高光譜成像技術在動物飼料成分分析中具有應用前景。NIRhyperspectralimagingforanimalfeedingredientapplications：P.Dantes探索了近紅外高光譜成像（NIRHSI）在動物飼料中的應用8。該技術能夠在像素級別提供樣品的化學成分信息，相比傳統的近紅外光譜具有優勢。研究中使用CorningNIRHSI儀器預測了豆粕中的蛋白質和油含量，并可視化了整個豆粕樣品中預測的蛋白質分布。預處理方法如標準正態變量和Savitzky-Golay導數能夠有效提高校準模型性能。此外，還將NIRHSI儀器與兩種商業單點近紅外光譜儀進行了比較。
在鯉上皮瘤細胞中的應用在鯉上皮瘤細胞進行基因功能研究時，轉染試劑和DNA的劑量以及取樣時間缺乏統一的數據支持。選取兩種常用轉染試劑Lipofectamine®2000和FuGENE®HD進行多配組轉染試驗，在28℃，以35mm培養皿鋪板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在轉染后48h達到比較高轉染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在轉染72h后轉染效率達到(±)%。通過構建鯉高不飽和脂肪酸合成相關轉錄因子過氧化物酶體增殖物***受體蛋白α（PPARα）的EGFP標簽載體進行驗證，兩種轉染試劑分別獲得了約4%和約8%的轉染效率，并對下游脂肪酸去飽和酶2（fads2）基因的轉錄調控效應進行檢測，結果為后續利用鯉上皮瘤細胞進行基因功能研究提供了數據支持5。在巨噬細胞中的應用商業轉染試劑Lipofectamine已***用于核酸的細胞質遞送和與細胞內先天免疫傳感器進行細胞源嚙合，以觸發I型干擾素（IFN）生產。然而，單獨對IIFN響應的脂質切積胺的影響尚未詳細研究。研究表明，Lipofectamine誘導在原始，I型IFN誘導依賴于干擾素調節因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要達洛/白細胞介素-1受體-含有結構域的適配器誘導的干擾素-β。相比之下，轉染試劑XFECT未***IIFN信令6。 在轉染中，DNA通常通過病毒或非病毒載體(如質粒)轉運到宿主細胞中。
脂質體轉染是一種常用的將外源基因導入細胞的方法，脂質體大小：脂質體的大小也可能影響轉染效率。較小的脂質體可能更容易進入細胞，但可能攜帶的 DNA 量較少。較大的脂質體可能攜帶更多的 DNA，但可能更難進入細胞。研究發現，陽離子脂質體的大小與轉染效率之間存在一定的關系。隨著脂質體尺寸的增加，轉染的主要途徑可能從網格蛋白介導的內吞作用轉變為脂筏介導的內吞作用，同時也可能觀察到巨胞飲作用。這種變化可能會影響脂質體在細胞內的運輸和釋放，從而影響轉染效率。肌內注射脂質體不能引起強烈的毒性反應，這與肺內或靜脈注射途徑的情況不同。上海非脂質體轉染試劑
納米顆粒的主要特性使它們能夠用于細胞轉染。青海轉染試劑檢測
網格蛋白介導的內吞途徑呼吸道合胞病毒（RSV）是導致嬰幼兒***的主要病毒病原體。研究表明，網格蛋白介導型內吞途徑是目前研究得較為透徹且經典的病毒入胞途徑。其中網格蛋白在此途徑中的地位很重要。通過針對網格蛋白重鏈的小干擾RNA（siRNA）抑制網格蛋白的表達，可以有效的抑制RSV***Hela細胞。這提示網格蛋白介導的內吞途徑在病毒感染細胞過程中發揮重要作用，同時也暗示了在某些情況下，RNA轉染試劑可能利用這一途徑進入細胞21。二、小窩蛋白介導的內吞途徑在研究非病毒載體用于小干擾RNA（siRNA）遞送時發現，將用組氨酸和半胱氨酸修飾的HIV-1Tat肽（mTat）與聚乙烯亞胺（PEI）結合，并與陽離子兩親脂質基試劑INTERFERin（INT）組合成的雜合載體（mTat/PEI/INT）能高效遞送siRNA。研究表明，FilipinIII和β-環糊精（小窩蛋白介導的內吞作用抑制劑）能***抑制mTat/PEI/INT/siRNA轉染，而氯丙嗪（網格蛋白介導的內吞作用抑制劑）則不能抑制mTat/PEI/INT/siRNA轉染。此外，mTat/PEI/INT在4°C時的轉染效率明顯低于37°C。這些結果表明，mTat/PEI/INT作為一種潛在的有吸引力的非病毒載體用于siRNA遞送，其轉染過程可能是通過小窩蛋白介導且依賴溫度的內吞途徑實現的。青海轉染試劑檢測