細(xì)胞凍存和復(fù)蘇實(shí)驗：一般來說，細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)移和保存，較佳的策略是進(jìn)行低溫保存（-70℃~-196℃），而細(xì)胞深低溫保存的基本原理是：在-70℃以下時，細(xì)胞內(nèi)的酶活性均已停止，即代謝處于完全停止?fàn)顟B(tài)，故而可以長期保存。細(xì)胞低溫保存的關(guān)鍵，在于通過0~20℃階段的處理過程，在此溫度范圍內(nèi)，冰晶呈針狀，極易招致細(xì)胞的嚴(yán)重?fù)p傷。經(jīng)過前人的長期試驗，發(fā)現(xiàn)細(xì)胞的凍存及復(fù)蘇基本原則是慢凍速融，這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑，這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外，減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法，這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時間內(nèi)即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對細(xì)胞造成損傷。1000 rmp離心5分鐘，去除離心管中的上清液，收集細(xì)胞沉淀。上海正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)

細(xì)胞凍存配制含10%DMSO或甘油的細(xì)胞凍存液，4℃預(yù)冷（新鮮配制的凍存液會產(chǎn)生大量的熱）；取對數(shù)生長期的細(xì)胞，用細(xì)胞消化酶將單層生長的細(xì)胞消化下來；懸浮細(xì)胞則直接將細(xì)胞收集到離心管中；離心1200rpm，6min；去除上清液，逐漸加入適量預(yù)冷的細(xì)胞凍存液，用吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻，計數(shù)，調(diào)節(jié)凍存液中的細(xì)胞終濃度為5×10e6/ml~1×10e7/ml；將細(xì)胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml；在凍存管上標(biāo)明細(xì)胞的名稱、凍存時間及操作人員姓名；凍存：標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min；到達(dá)-80℃時，則可迅速放入液氮中。成都無血清細(xì)胞凍存液廠家推薦將分裝好的細(xì)胞凍存管，直接置于-80 度冰箱過夜保存。

細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融，實(shí)驗證明這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑，這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外，減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法，這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時間內(nèi)即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對細(xì)胞造成損傷。細(xì)胞凍存是細(xì)胞培養(yǎng)、引種、保種和保證實(shí)驗順利進(jìn)行的重要技術(shù)手段。在細(xì)胞建株和建系中，及時凍存原始細(xì)胞是十分重要的。在雜交瘤單克隆抗體的制備過程中，雜交瘤細(xì)胞、每次克隆化得到的亞克隆細(xì)胞的凍存保種常常是必不可少的實(shí)驗操作。因為在沒有建立一個穩(wěn)定的細(xì)胞系或穩(wěn)定分泌抗體的細(xì)胞系的時候，細(xì)胞的培養(yǎng)過程中隨時可能因細(xì)胞的污染、分泌抗體能力的喪失或遺傳變異等等導(dǎo)致實(shí)驗失敗，如果沒有原始細(xì)胞的凍存，則因為上述的意外而前功盡棄。

細(xì)胞凍存注意事項：1.取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套，護(hù)目鏡。此項尤為重要，細(xì)胞凍存管可能漏入液氮，解凍時凍存管中的氣溫急劇上升，可導(dǎo)致炸列。2.凍存液的問題：凍存液的配置已是常識，在這里不作詳述，但二甲基亞砜（DMSO）對細(xì)胞不是完全無毒副作用，在常溫下，二甲基亞砜對細(xì)胞的毒副作較大，因此，必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)蘇溫度太慢，會造成細(xì)胞的損傷，二甲基亞砜（DMSO）選擇進(jìn)口產(chǎn)品。3.離心前須加入少量培養(yǎng)液。細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高，注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度，以減少對細(xì)胞的損傷。鏡檢后，研究者可根據(jù)各自方法和需要來進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。

細(xì)胞凍存的操作步驟：1.配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的凍存培養(yǎng)液；2.取對數(shù)生長期的細(xì)胞，去除舊培養(yǎng)液，用PBS清洗。3.去除PBS，加入適量胰蛋白酶（覆蓋培養(yǎng)皿表面）把單層生長的細(xì)胞消化下來；4.離心1000rpm，5min；5.去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養(yǎng)液，用吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻，計數(shù)，調(diào)節(jié)凍存液中細(xì)胞的較終密度為5×106/ml～1×107/ml；6.將細(xì)胞分裝入凍存管中，每管1～1.5ml；7.在凍存管上標(biāo)明細(xì)胞的名稱，凍存時間及操作者；8.凍存：標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序為降溫速率-1～-2℃/min；當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細(xì)胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內(nèi)。無血清細(xì)胞凍存液的優(yōu)勢：不含血清，較大減少細(xì)胞污染。武漢正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液

無血清凍存液特性：適合無血清培養(yǎng)細(xì)胞與含血清培養(yǎng)細(xì)胞。上海正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)

使用方法：1)細(xì)胞超凈臺無菌環(huán)境，1.5mlEP管內(nèi)加入細(xì)胞混懸劑均勻混懸細(xì)胞，細(xì)胞終濃度為5×106個/ml，混懸液體積為200μl。細(xì)胞凍存劑冰水混合物中預(yù)冷，逐滴加入細(xì)胞凍存劑800μl，細(xì)胞混懸劑與細(xì)胞凍存劑的體積比控制在1:4。2)開啟程序性降溫，降溫速率為1℃/min，較后降溫至-80℃以下進(jìn)行凍存。將比較例1凍存后細(xì)胞的復(fù)蘇率與實(shí)施例5凍存后細(xì)胞的復(fù)蘇率進(jìn)行對比，具體結(jié)果如附圖1所示，可見采用本發(fā)明的凍存方法能夠明顯提高細(xì)胞的復(fù)蘇率。其他實(shí)施例通過與比較例1進(jìn)行比較，也得到相同的試驗結(jié)果。本發(fā)明的凍存方法不僅可以明顯提高凍存后細(xì)胞復(fù)蘇率，同時還可減少不同批次細(xì)胞凍存復(fù)蘇率不穩(wěn)定、以及避免由血清中的支原體，細(xì)菌，朊細(xì)菌及其他細(xì)菌顆粒引發(fā)的污染。上海正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)