凍存細胞注意事項：冷凍保護劑可降低培養基的冰點，并可減緩冷卻速度，較大降低冰晶形成的危險(冰晶可損傷細胞，導致細胞死亡)。注：DMSO可促進有機分子進入組織。操作含DMSO的試劑時，應采用與此類物質安全危害相適應的設備和操作規范，并應按照當地法規處置此類試劑。建議可使用廠商生產的無血清細胞凍存液，使用方便，復蘇率高。注意冷凍保護劑DMSO的品質：DMSO應為試劑級等級，無菌且無色，以5-10ml小體積分裝，4℃避光保存，勿作多次解凍。在凍存細胞時將細胞懸浮于凍存液中，可使冰點降低，提高細胞膜對水的通透性。廈門無血清細胞凍存液廠家直銷

無血清細胞凍存液：1.逐滴加入5-7mL的預熱的培養基到15mL的離心管中，加入的同時輕輕混勻。2.室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。3.吸出培養基，使細胞沉淀完好無損。使用2mL血清移液管輕輕將細胞沉淀重懸于1mL的培養基中。小心保持細胞作為聚集體。4.將0.5mL的細胞混合物轉移到含有培養基的預包被的6孔板的培養孔中（例如，每個冷凍管可以鋪板兩個孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據凍存的細胞聚集體數量進行調整。通常在復蘇后，要比在常規的傳代鋪板更多的細胞聚集體數量。將培養板放入37°C培養箱。快速前后左右的搖晃培養板數次，將細胞聚集體分布均勻。24小時內不要移動培養板。正規無血清細胞凍存液生產廠家存細胞時需現配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液。

細胞凍存秘籍：細胞凍存對于大多數動物細胞，通常每分鐘下降-1至-3℃。控制冷卻過程的較好方法是使用程序降溫系統。如果沒有程序降溫系統，可以使用程序降溫盒，然后將其置于-70℃至-90℃冰箱中過夜。雖然這種方法適用于許多細胞系，但不能提供可控的，均勻的或可重復的冷卻，不建議用于珍貴細胞。無論使用哪種冷卻方法，重要的是快速高效地將其傳輸到較終存儲位置。如果轉移不能立即完成，可以將小瓶置于干冰上一段時間。這樣可以避免在轉移過程中發生溫度升高而損害細胞。在這個轉移過程中溫度升高是解凍后影響細胞活力的主要原因。

干細胞無血清凍存液操作事項：使用說明：1.細胞消化和計數，用胰酶對待凍存的細胞進行消化，并對細胞進行計數。2.1000轉/min離心5分鐘（4℃），去掉上清。3.根據細胞計數的情況，加入適量的干細胞無血清凍存液，使細胞密度在1×106左右（或根據自己希望達到的細胞密度）。4.輕輕地重懸細胞（務必重懸均勻）。5.將重懸的細胞按等份加入到滅菌的凍存管（需提前做好標記或者貼上標簽）中，旋緊凍存管蓋。6.將凍存管放入凍存盒中，然后將凍存盒直接放入-80℃。7.第二天將細胞從-80℃轉移到液氮中。注意事項：1.用處于對數生長期的細胞進行凍存。2.控制好胰酶的消化時間，切記消化過度，會影響復蘇效果。3.重懸細胞的過程中，請務必要輕柔，以免損傷細胞，但同時也一定要充分重懸，這樣細胞在復蘇時才不會成團。4.細胞操作請注意無菌。程序降溫凍存技術要點是慢凍，標準的凍存程序為降溫速率-1～-2/℃ min。

無血清細胞凍存液，細胞凍存與復蘇后，平均活細胞回收比例超過80%。與含血清凍存液比較，BI無血清凍存液細胞存活率都有較佳的表，BI無血清細胞凍存液也適用于動物血清培養的細胞凍存。復蘇細胞：1.將細胞凍存管由液態氮中取出，置于37度水浴快速溶解回溫。此時可準備培養基、無菌15ml離心管、培養瓶。2.于生物安全柜內，直接以少量培養基反復沖融，使細胞團塊化凍。3.先在無菌15ml離心管中加入5ml培養基，再將化凍的細胞懸液加入離心管中。以200~300g，3分鐘離心收集細胞。4.倒去上清液，以新鮮培養基重懸細胞，移到培養瓶中培養。5.隔天更換新鮮培養基，并觀察細胞存活狀況。無血清細胞凍存液產品性能：傳統的凍存液，一般由胎牛血清、DMSO等組分組成。南昌無血清細胞凍存液廠家推薦

不同的凍存方法替代了不同的凍存體系。廈門無血清細胞凍存液廠家直銷

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、凍存細胞是為了留種，所以要選擇高濃度的細胞量進行凍存。正常情況下，當細胞濃度達到1*105/ml時即可凍存，具體是多少量主要根據個人觀察。2、二甲基亞砜（DMSO)因為穿透細胞的能力較強，因此作為常用的凍存劑，也可以叫做細胞保護劑加入到細胞懸液中。網上有些分享說道，如果選用DMSO，整個細胞懸液的制作過程都要在4℃環境下進行。本人采用過這種方法凍存過A549和某一原代細胞，發現A549復蘇存活率和正常凍存的過程相比并沒有明顯區別，而原代細胞的接種率確實有所上升，可能是因為是A549細胞比較皮實，這種方法更適用于比較脆弱的細胞吧。廈門無血清細胞凍存液廠家直銷