無細胞蛋白表達技術（CFPS）的雛形可追溯至20世紀50年代。1958年，Zamecnik頭次證明細胞裂解物中的翻譯機器可在體外合成蛋白質，為技術奠定基礎。1961年，Nirenberg和Matthaei利用大腸桿菌裂解物破譯遺傳密碼子，推動了分子生物學的發展。然而，早期技術因表達量低、穩定性差，長期局限于實驗室研究，主要用于密碼子解析和翻譯機制探索，未實現規模化應用。近十年，無細胞蛋白表達技術技術加速向醫療、合成生物學等領域滲透。例如，在COVID-19期間，該技術被用于快速生產疫苗抗原和抗體。同時，AI算法的引入實現了反應條件智能預測，進一步優化表達效率。中國企業如蘇州珀羅汀生物通過自主研發試劑盒，推動國產化替代。未來，無細胞蛋白表達技術或與代謝工程、微流控技術結合，成為生物制造和準確醫療的he xin工具。添加硒代甲硫氨酸的體外蛋白表達實驗??，直接獲得 X 射線晶體學級硒標記蛋白。高通量蛋白表達方法

一批技術驅動型初創公司正在細分領域嶄露頭角。例如，Synthelis（法國）專注于膜蛋白生產，其裂解物可實現GPCRs和離子通道的高效合成；ArborBiotechnologies（美國）則通過機器學習優化無細胞蛋白表達技術反應條件，用于CRISPR酶和定制化蛋白的快速開發。此外，GreenlightBiosciences（現已與Prenetics合并）將無細胞蛋白表達技術與mRNA技術結合，推動低成本疫苗和RNA療法生產。這些企業通常以授權合作或定制化服務模式，與藥企（如輝瑞、Moderna）建立深度綁定，加速技術商業化落地。大腸桿菌可溶蛋白表達大腸桿菌裂解物是??同位素標記蛋白表達??的首要方案，因快速反應能zai大化標記原子利用率。

前沿高校和研究所是無細胞蛋白表達技術創新的源頭。哈佛大學George Church實驗室開發的"全基因組裂解物"技術，明顯提升了復雜途徑的體外重構能力；東京大學則通過微流控-無細胞蛋白表達技術聯用系統，推動單細胞蛋白組學研究。值得注意的是，合成生物學公司（如Ginkgo Bioworks、Zymergen）正將無細胞蛋白表達技術納入其自動化生物鑄造平臺，用于高通量酶進化。而傳統發酵技術公司（如DSM）也開始布局無細胞蛋白表達技術，探索其在可持續蛋白（如無細胞合成乳清蛋白）中的應用，預示著技術融合的跨界競爭趨勢。

相較于傳統細胞表達系統，體外蛋白表達的he xin優勢在于：時間效率ge min性提升： 省略細胞培養與基因整合步驟，目標蛋白可在2-8小時內合成；開放體系可編程性： 直接添加非天然氨基酸、同位素標記底物或熒光基團，實現對產物化學性質的準確調控；毒性蛋白表達可行性： 無細胞環境避免毒性蛋白導致的宿主死亡，為凋亡因子等特殊分子研究提供可能；微型化兼容性： 反應體積可縮小至納升級，適配高通量篩選需求。這些特性使體外蛋白表達成為 功能蛋白快速驗證的推薦平臺，尤其在需平行測試多突變體的場景中具明顯優勢。小麥胚芽裂解物??則憑借??低核酸酶活性??成為長期反應（>24小時）的理想選擇。

傳統微生物發酵生產工業酶面臨周期長（>72 小時）且純化復雜的瓶頸。新一代連續流體外蛋白表達系統 通過耦合反應器實現高效合成：將大腸桿菌裂解物與纖維素酶基因模板泵入螺旋管，在 30℃ 恒溫條件下持續產出酶蛋白，每小時產量達 120 mg/L，較批次反應提高 8 倍。德國 BRAIN AG 公司利用此技術生產 耐熱木聚糖酶，直接添加至造紙漿料中降解半纖維素，使漂白劑用量減少 30%。該系統還支持 實時補料——補充消耗的氨基酸和能量物質可維持 48 小時穩定表達，單位酶成本降至 $2.5/g，逼近發酵法經濟閾值。體外蛋白表達需使用??不含質粒骨架的模板??以避免副反應。外源蛋白表達的性價比

添加 2 mM 鎂離子可使 ??大腸桿菌體外蛋白表達??產量提高 60%。高通量蛋白表達方法

在中國，無細胞蛋白表達技術（CFPS）的推廣面臨he xin原料依賴進口的挑戰。商業化裂解物、高效能量再生系統等關鍵試劑仍以Thermo Fisher、Merck等國際品牌為主，國產替代品在活性和穩定性上存在差距，導致成本居高不下。此外，無細胞蛋白表達技術工藝的規模化放大技術尚未成熟，反應體系均一性、產物收率等問題限制了其在GMP生產中的應用。盡管國內科研機構（如中科院、清華大學）在基礎研究上取得突破，但產學研轉化效率較低，缺乏類似Synthelis的專注無細胞蛋白表達技術的本土企業，難以形成完整的產業鏈條。高通量蛋白表達方法