無細胞蛋白表達技術（CFPS）根據反應體系的設計可分為分批式（Batch）、雙層式（Bilayer）和連續交換式（CECF）三種主要形式。分批式是Zui基礎的形式，反應在單一試管中進行，操作簡單但受限于底物耗盡和副產物積累，表達時間通常只4小時，適合小規模篩選（如Promega的試劑盒）。雙層式通過密度差異將反應液與緩沖液分層，延長反應時間至8-20小時，日本CFS公司的產品采用此設計。連續交換式（CECF）通過半透膜連接反應室與供應室，持續補充底物并移除副產物，可將反應延長至24小時，產量明顯提高（如德國RTS系統的1mL及以上規模產品）添加0.5 mM鎂離子可優化??小麥胚芽體外蛋白表達??的翻譯起始效率。分泌蛋白表達服務

無細胞蛋白表達技術CFPS的開放體系特性使其對實驗環境極為敏感。裂解物中的酶活性會隨凍融次數下降，需分裝保存并避免反復凍融；反應中核酸酶殘留可能導致模板降解，常需額外添加抑制劑（如RNasin）。此外，不同批次的裂解物活性可能存在差異，導致實驗結果難以重復。例如，某研究組發現同一模板在連續三次實驗中蛋白產量波動達30%，后來通過標準化裂解物制備流程（如固定細胞生長OD值）才解決該問題。這些細節要求使得CFPS的操作容錯率較低。桿狀病毒蛋白表達注意事項例如HIV蛋白酶在通過體外蛋白表達后仍切割底物蛋白，但其毒性被限制在封閉體系內。

體外蛋白表達技術的重點在于利用細胞裂解物中的生物合成機器（核糖體、tRNA、翻譯因子）在試管中直接合成蛋白質。以大腸桿菌系統為例：首先制備含T7啟動子的線性DNA模板，將其與商業化裂解物（如RocheRTS100）、能量混合物（ATP/GTP）及20種氨基酸混合，在37℃振蕩反應2-4小時即可完成蛋白表達。整個過程無需細胞培養與基因轉染，速度比傳統方法快10倍以上。例如，COVID19刺突蛋白RBD結構域的體外表達只需6小時，而HEK293細胞系統需5天。該技術的關鍵優勢是開放體系的可編程性——可直接添加非天然氨基酸（如Azidohomoalanine）合成定制化蛋白，為藥物偶聯物開發提供高效平臺。

無細胞蛋白表達技術（CFPS）雖然具有快速、靈活等優勢，但仍存在一些關鍵缺點。首先，成本較高，商業化裂解物、能量試劑和酶的價格昂貴，小規模實驗單次反應成本可達數百元，大規模生產的經濟性尚未完全解決。其次，蛋白產量較低，反應通常在幾小時內終止，產量（0.1-1 mg/mL）遠低于細胞表達系統（如大腸桿菌可達10 mg/mL以上）。此外，復雜蛋白表達受限，原核裂解物缺乏真核翻譯后修飾能力（如糖基化），而真核裂解物成本更高；部分蛋白可能因折疊不完全而喪失活性。技術操作上，反應條件（pH、離子強度等）需精細調控，且線性DNA模板易降解，增加了實驗難度。CFPS目前更適合小規模應用，在超長蛋白（>100 kDa）表達和工業化連續生產方面仍面臨挑戰。未來需通過開發低成本試劑、優化能量再生系統和自動化工藝來突破這些瓶頸。??scFv 抗體片段的體外蛋白表達??在4小時內完成，較傳統CHO 細胞系統提速 10 倍。

無細胞蛋白表達技術在快速響應公共衛生事件和jun shi應用中表現突出。例如，在COVID-19期間，無細胞蛋白表達技術被用于數小時內合成病毒抗原，加速疫苗候選物篩選。美國DARPA支持的“生物制造”項目利用凍干無細胞蛋白表達技術試劑，在戰場環境中按需生產止血蛋白或抗體，實現便攜式、無需冷鏈的即時生物制造。這類場景凸顯了無細胞蛋白表達技術在時效性和環境適應性上的不可替代性。根據應用需求，無細胞蛋白表達技術可整合非天然氨基酸（通過修飾tRNA）、脂質體（用于膜蛋白表達）或翻譯后修飾酶（如糖基化酶）。當體外蛋白表達效率不足時，需檢測模板完整性并優化啟動子強度。常用蛋白表達下調

大腸桿菌體外蛋白表達的單次反應成本（$1.5）只為哺乳細胞系統的 1/50。分泌蛋白表達服務

無細胞蛋白表達技術在藥物研發領域具有明顯優勢，尤其適用于快速生產zhi liao性蛋白、抗體和疫苗抗原。例如，在COVID-19期間，研究人員利用CFPS在幾小時內合成COVID-19刺突蛋白的RBD結構域，大幅加速了疫苗候選分子的篩選和驗證。此外，該技術可高效表達傳統細胞系統難以生產的毒性蛋白（如某些抗ai藥物靶點）或易降解蛋白（如細胞因子），并支持非天然氨基酸插入，為抗體藥物偶聯物（ADCs）的開發提供準確修飾平臺。相比哺乳動物細胞培養（通常需要1-2周），CFPS可在24小時內完成從基因到蛋白的全流程，明顯縮短藥物發現周期。分泌蛋白表達服務