無細胞蛋白表達技術（CFPS）根據反應體系的設計可分為分批式（Batch）、雙層式（Bilayer）和連續交換式（CECF）三種主要形式。分批式是Zui基礎的形式，反應在單一試管中進行，操作簡單但受限于底物耗盡和副產物積累，表達時間通常只4小時，適合小規模篩選（如Promega的試劑盒）。雙層式通過密度差異將反應液與緩沖液分層，延長反應時間至8-20小時，日本CFS公司的產品采用此設計。連續交換式（CECF）通過半透膜連接反應室與供應室，持續補充底物并移除副產物，可將反應延長至24小時，產量明顯提高（如德國RTS系統的1mL及以上規模產品）添加納米盤磷脂的 ?GPCR體外蛋白表達??系統，功能性受體得率提升至80%。大腸桿菌可溶蛋白表達下調

體外蛋白表達系統的本質是利用 純化的細胞裂解物（含核糖體、tRNA、翻譯因子及能量再生組分）重構蛋白質合成機器。在ATP/GTP供能條件下，核糖體通過mRNA模板介導的密碼子-反密碼子配對，驅動氨基酸按序列聚合成肽鏈。該過程的關鍵調控點包括：翻譯起始效率（受5'UTR二級結構及Shine-Dalgarno序列影響）、延伸速率（依賴EF-Tu/G因子濃度）和終止準確性（釋放因子RF1/2活性）。體外蛋白表達的高效性源于其 去除了細胞膜屏障，使反應底物濃度可人為提升至生理水平的10-100倍，大幅加速肽鏈合成動力學。大腸桿菌重組蛋白表達公司大腸桿菌體外蛋白表達??的成本只為兔網織紅細胞系統的1/20，適合大規模篩選。

體外蛋白表達系統的明顯缺陷在于 缺乏真核細胞器結構，導致關鍵翻譯后修飾難以實現：糖基化不完整性： 裂解物中缺乏高爾基體轉運機制，只能生成高甘露糖型等簡單糖鏈，無法合成復雜雙觸角N-糖；磷酸化/乙酰化失衡： 激酶/磷酸酶網絡不完整，使信號通路蛋白的修飾狀態與生理條件差異明顯；二硫鍵錯配風險： 氧化還原環境調控不足導致多二硫鍵蛋白錯誤折疊率升高。這些局限使體外蛋白表達在 zhi liao性抗體等需精確修飾的蛋白生產中應用受限。

從實驗室走向產業化，無細胞蛋白表達技術還面臨多重障礙。規模化生產時，反應體系的均一性和重復性難以保證，且大規模制備高活性裂解物的成本效益比仍需優化。在下游純化環節，由于反應混合物中含有大量核酸、酶和其他細胞組分，目標蛋白的分離純化步驟比傳統方法更復雜。此外，目前大多數CFPS工藝仍處于分批反應模式，連續化生產設備的開發滯后，限制了其在工業流水線中的應用潛力。盡管存在這些挑戰，隨著微流控技術、人工智能優化反應條件等新方法的引入，CFPS技術正在逐步突破這些產業化瓶頸。我們需要先??構建蛋白表達載體??，再轉染細胞。

凋亡因子（如caspase-3）、細菌du su（如白喉du suA鏈）在細胞內表達會引發宿主死亡。體外蛋白表達系統通過無細胞環境規避毒性效應：在添加線粒體膜組分的兔網織紅細胞裂解物中，全長BAX蛋白（21kDa）表達量達0.8mg/mL，并成功模擬其介導的細胞色素C釋放過程（CellDeathDiffer.,2024）。該系統還可表達HIV蛋白酶（活性>95%），用于高通量抑制劑篩選，加速抗病毒藥物開發。真he dan白的糖基化修飾（如抗體Fc段N-糖）是zhi liao性蛋白功能的he xin。傳統體外蛋白表達因缺乏高爾基體，糖基化效率不足5%。突破性方案是在HEK293裂解物中添加重組糖基轉移酶復合體（含GnT-I、GnT-II、FUT8），使曲妥珠單抗的復雜雙觸角糖型比例升至80%（Science,2022）。結合UDP-GlcNAc底物連續補料，糖均一性（G0F:G2F=1:1.2）媲美哺乳細胞表達，為下一代抗體偶聯藥物（ADC）提供新生產路徑。無細胞體系的開放性??允許直接添加非天然氨基酸，擴展了??體外表達蛋白??的化學多樣性。大腸桿菌重組蛋白表達陽性

體外蛋白表達技術使??致死性靶點研究成為可能??，為新藥開發提供關鍵依據。大腸桿菌可溶蛋白表達下調

無細胞蛋白表達技術在實際應用中也存在一些技術短板。由于反應體系缺乏活細胞的代謝調控機制，能量供應和原料再生效率較低，導致反應持續時間較短（通常只維持4-6小時），限制了蛋白產量的進一步提升。同時，該技術對反應環境高度敏感，溫度波動、氧化應激或污染物都可能影響蛋白合成效率，這對實驗操作的穩定性提出了更高要求。此外，雖然CFPS能表達傳統細胞系統難以生產的毒性蛋白，但對于需要復雜折疊或多亞基組裝的蛋白（如某些膜蛋白或超大分子復合物），其成功率仍然有限。大腸桿菌可溶蛋白表達下調