此外，文章作者對每個步驟的樣品進行納米顆粒分析（NTA），結果發現：澄清環節后，M-SAN HQ中鹽核酸酶和Benzonase處理組才出現比較明確的LV病毒顆粒峰；TFF處理后，回流液樣品的LV病毒顆粒峰更加尖銳，表明病毒顆粒分散度更好、穩定性更高。回流液的NTA結果進一步表明，M-SAN HQ中鹽核酸酶處理組只有一個病毒顆粒峰，而Benzonase處理組的回流液中有三個峰。作者推測Benzonase處理組的病毒顆粒還有嚴重的病毒團聚現象，而呈現多峰現象。中鹽核酸酶更適合細胞培養體系，相比全能核酸酶，酶用量減少到1/3-1/2，HCD去除效率更高。麗水倍篤生物中鹽核酸酶代理商

ArcticZymes Technologies提供獨特特性的鹽活性核酸酶（Salt Active Nucleases，SANs）系列產品，主要包含SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶。這兩款酶都是非特異核酸內切酶，跟Benzonase一樣能高效降解任何形式（雙鏈、單鏈、線狀、環狀）的DNA和RNA；都來自于深海microbes，通過Pichia pastoris發酵生產得到。這兩款酶的區別在于發揮酶活的適宜鹽濃度不同，——M-SAN HQ中鹽核酸酶的適宜鹽濃度在175mM-250mM，而SAN HQ高鹽核酸酶的適宜鹽濃度在400mM-600mM。嘉興70950-160中鹽核酸酶報價表M-SAN HQ中鹽核酸酶終產品放行檢測包括microbe、Fungus及內毒檢測等；

除了獲得載體的滴度及產量，生產慢病毒更關心的指標主要是各種污染物的去除。總DNA污染的去除百分比在99.1-99.84%，總蛋白污染物的去除百分比在99.85-99.9%。針對宿主細胞的DNA（HCD）及蛋白（HCP），有報道其去除百分比分別為99.8%和99.4%。因為不僅殘存的DNA可能是個問題，而且DNA的大小以及由此引起的可能轉移整個有功能的開放閱讀框也是問題，因此監管機構對殘存DNA污染的分子量上限的要求越來越高。例如，FDA的指南‘生產用于傳染病適應癥的病毒疫苗的細胞基質和其他生物材料的特性和鑒定’中說明，殘留的細胞宿主的DNA片段不能超過一個功能基因的長度，估計在200bp左右。

慢病毒大規模純化的捕獲步驟包括：膜過濾澄清，隨后切向流過濾/超濾或者體積排阻色譜濃縮。此外，需用核酸酶（benzonase或M-SAN HQ中鹽核酸酶）來去除細胞殘留的、質粒來源的DNA污染。這兩個步驟順序可以調整，依據項目工藝而定。兩種工藝路線各有優缺點：先用核酸酶消化的優點是可去除大的DNA片段，且后續步驟可以去除殘留核酸酶；但所用的核酸酶的量也非常大。與此相反，將核酸酶步驟后置的優點是大幅降低核酸酶的量(成本降低)；但后面的步驟必須有將核酸酶去除的能力。此外，后期用核酸酶的缺點是核酸污染可能會結合慢病毒顆粒形成沉淀，進而導致慢病毒在純化中流失，從而影響得率。ArcticZymes的產品開發、生產、銷售和營銷過程均通過ISO13485質量標準的認證。

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。M-SAN HQ中鹽核酸酶在生理鹽條件下具有更高活性，降解HCD效率更高，便于HCD的去除。70960-001中鹽核酸酶使用方法

在biopharma生產，如細胞基因medicine及vaccine生產中，宿主細胞DNA殘留是關鍵質量參數之一。麗水倍篤生物中鹽核酸酶代理商

核酸酶活性受到很多因素影響，如鹽濃度、pH、底物、溫度等。因此，不同客戶、不同項目中核酸酶的使用條件都不一。目前，生物制藥行業對Benonase全能核酸酶的使用比較熟悉，如生理鹽或低鹽濃度、脫鹽操作等。對于大部分使用Benzonase的項目，使用M-SAN HQ中鹽核酸酶可以完全替代，而且溫度、Mg2+濃度等條件不用做任何調整，同樣酶量的M-SAN HQ對宿主細胞DNA（HCD）的去除效果更好、病毒載體得率更高。經過工藝優化后，可以將M-SAN HQ中鹽核酸酶的用量減少到原來的1/3-1/2，且HCD去除效果及產品得率更高。麗水倍篤生物中鹽核酸酶代理商