在干細胞醫治領域， 某些疾病靠單純的細胞替代并不能取得滿意效果。利用逆轉錄病毒和慢病毒將外源目的基因整合到干細胞基因組，對基因功能缺失的遺傳病具有良好療效，但也存在一定致瘤風險。相比之下，CRISPR/Cas9基因編輯技術能夠精確實現基因敲入、敲除及堿基修復。因此， 采用CRISPR/Cas9基因編輯技術對干細胞進行基因改造，不僅能夠增加干細胞醫治的疾病范圍，也能更大程度地保證療效的安全性。目前，CRISPR/Cas9在干細胞醫治領域發揮著重要作用，同時更多由CRISPR/Cas9編輯的干細胞藥物正在開發中。生理鹽濃度下，M-SAN HQ中鹽核酸酶性能優于常用核酸酶。天津等滲條件中鹽核酸酶70950

通過三質粒瞬轉體系生產病毒載體，會引入宿主細胞DNA殘留（HCD）、蛋白殘留（HCP）、工藝雜質（如antibiotics、核酸酶等外源物質）等污染，存在潛在的致瘤性和免疫原性等風險。藥品監管機構一般允許生物制品中存在10ng/dose以下的殘留DNA。此外，根據雜質來源、工藝以及產品類型不同，也會對HCD限度做不同要求。為了達到這個要求，一般通過核酸酶處理和色譜聯用的方法。一般在細胞培養液裂解/收獲、澄清收獲及超濾濃縮等環節加入核酸酶處理，需要工藝摸索來確認處理方式。連云港70950-150中鹽核酸酶聯系方式M-SAN HQ中鹽核酸酶兼容常見細胞培養基，在多種培養基條件下去除核酸污染效率更高；

細胞基因藥物領域的進展使得對高質量基因轉移技術的需求急劇增加，包括高質量慢病毒載體(LV)的大規模生產。宿主細胞DNA殘留（HCD）是一類主要的工藝相關雜質，對下游純化帶來很大挑戰。根據相關法規要求，需要去除HCD才能達到臨床級LV。HCD去除是通過核酸酶處理聯合下游工藝（DSP）共同實現的。文章作者研究了兩款核酸酶M-SAN HQ中鹽核酸酶(ArcticZymes Technologies)和Benzonase(Merck)對HCD去除效率的差別，其下游工藝包含過濾澄清及TFF超濾。

跟其他類型的核酸酶一樣，SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶的滅活方法有很多，分為可逆滅活及不可逆滅活。金屬離子螯合劑如EDTA會可逆抑制兩者的活性，加入的EDTA濃度一般是溶液中Mg2+濃度的2倍左右即可完全抑制活性；后續補加過量的Mg2+即可恢復核酸酶活性。加熱、還原劑（如DTT）、咪唑、甘油及表面活性劑（如高于15%濃度的Triton X-100、SDS、尿素等）等都可以使其不可逆失活。在生物工藝流程，需要結合上下游應用需要選擇合適的方法去除或滅活核酸酶。M-SAN HQ中鹽核酸酶的檢測標準，都符合USP-EP要求。

ArcticZymes Technologies成立于20世紀80年代后期，總部位于挪威北部的特羅姆瑟(Troms?)；立足北極海洋區，致力于從海洋生物中識別新的冷適應酶，用于分子研究、體外診斷和藥物領域。以其產品的獨特性質及超過30年的生產經驗積淀，ArcticZymes Technologies得到國際分子診斷及生物藥物領域客戶的肯定及大力支持，ArcticZymes產品線已用于診斷產品及生物藥物生產中。2005年，ArcticZymes在Olso證券交易所上市，并且持續得到挪威國家基金的支持。在已有工藝中，不需做任何調整，用中鹽核酸酶能夠完全替換全能核酸酶，且去除HCD效率更高；南通70950-202中鹽核酸酶供應商

US FDA指南要求：重組biologics終產品中，核酸雜質含量低于10ng/dose。天津等滲條件中鹽核酸酶70950

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。天津等滲條件中鹽核酸酶70950