在不同的鹽濃度條件下，AAV病毒載體的存在形式不同。低鹽濃度條件下，AAV病毒顆粒表面會通過電荷作用等非特異結合到HCD上，從而產生病毒顆粒團聚現象。隨著溶液鹽濃度上升，AAV病毒顆粒與HCD的離子相互作用會被破壞，AAV病毒顆粒會逐漸解離。當鹽濃度升到更高范圍（>400mM左右），AAV病毒顆粒與HCD的結合更弱，AAV顆粒更穩定。因此，在高鹽濃度溶液中，AAV顆粒更加穩定，且有數據表明高鹽濃度不會削弱AAV的侵染能力。所以，我們推薦提高AAV病毒生產中的鹽濃度。SAN HQ高鹽核酸酶更適合用于AAV生產。河南SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-160

AAV病毒滴度通常分為物理滴度和infection滴度。物理滴度一般是指基因組滴度或者衣殼滴度。在測定AAV的含量時，通常采用基因組滴度或者衣殼滴度作為單位，其中基因組滴度為攜帶基因組的AAV的濃度，衣殼滴度為AAV物理顆粒的濃度。基因組滴度一般采用qPCR、ddPCR、染料法、UV/Vis等方法來測定；衣殼滴度主要是通過ELISA、HPLC等方法來測定。AAV基因組滴度檢測的關鍵在于盡可能徹底去除AAV衣殼外的HCD殘留，減少污染核酸對qPCR或ddPCR的影響。經典方法是加入常規核酸酶（如Dnase I、Benzonase等）消化AAV衣殼外的HCD殘留，然后加入Proteinase K破碎病毒衣殼，進行后續檢測。經過對比發現，用SAN HQ高鹽核酸酶替代常規核酸酶處理AAV病毒，能夠更高效去除衣殼外的核酸殘留，qPCR或ddPCR結果重復性更高、更穩定。鹽城70921-160高鹽核酸酶工廠直銷SAN HQ高鹽核酸酶促進殘留DNA的消化，有助于符合FDA要求。

宿主細胞DNA殘留的擔憂是基于致ai風險理論，特別是生產細胞系所包含的致ai序列，比如較常見腺病毒基因E1A和E1B（HEK293, PerC.6 和CAP 細胞系），人乳tou瘤病毒E6和E7基因（HeLa細胞系)等。當使用致ai細胞系生產AAV時，下游純化須盡可能減少殘留DNA。工業上一般使用核酸酶分解殘留DNA，普遍認為小于200 bp的DNA片段可有效降低致ai風險。宿主細胞蛋白殘留與免疫原性、炎癥或過敏性休克有關。盡管與非人類的生產原料相比（非人類細胞系如BHK21或昆蟲細胞，以及輔助病毒如HSV、腺病毒、桿狀病毒），人類細胞免疫原性比較弱。

已有文獻表明，高鹽濃度能夠破壞染色質結構，讓核小體解聚。在能耐受高鹽條件的病毒載體（如AdV/AAV等）生產中，高鹽濃度使宿主細胞DNA（HCD）解聚，讓核酸片段暴露，提高了核酸片段的可及性。而ArcticZymes的SAN HQ高鹽核酸酶能夠在高鹽條件下更好發揮酶切活性，作為高鹽條件下去除HCD的更好選擇。SAN HQ高鹽核酸酶的出現，讓一些通過常規方法很難解決的工藝問題得到高效解決，不僅提高了生產效率，降低了藥物生產成本，更拓寬了生物工藝生產的邊界。在AAV生產過程中使用SAN HQ高鹽核酸酶。

目前基因藥物領域常用的病毒載體有腺病毒、慢病毒、重組腺相關病毒（rAAV）以及逆轉錄病du等，其中AAV因其免疫原性極低、安全性高、宿主細胞范圍廣、擴散能力強、表達穩定以及特異性強等優勢脫穎而出。據NIH統計，已有超過200個正在進行或已完成的基因藥物臨床試驗使用rAAV載體。盡管rAAV基因藥物已顯示出巨大的前景，但是強大、穩健而且可放大的基因載體生產制造工藝一直是CGT行業的痛點。目前rAAV生產平臺主要有三種：三質粒瞬轉體系（TransientTransfection, TT）、桿狀病毒表達載體體系(Baculovirusexpression vector，BEV)和包裝細胞體系(Packaging/Producercell line，PCL)。ArcticZymes Technologies成立于20世紀80年代后期，總部位于挪威北部的特羅姆瑟(Troms?)。河北進口生物試劑高鹽核酸酶70960-001

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通過三質粒瞬轉體系生產病毒載體，會引入宿主細胞DNA殘留（HCD）、蛋白殘留（HCP）、工藝雜質（如antibiotics、核酸酶等外源物質）等污染，存在潛在的致瘤性和免疫原性等風險。藥品監管機構一般允許生物制品中存在10ng/dose以下的殘留DNA。此外，根據雜質來源、工藝以及產品類型不同，也會對HCD限度做不同要求。為了達到這個要求，一般通過核酸酶處理和色譜聯用的方法。一般在細胞培養液裂解/收獲、澄清收獲及超濾濃縮等環節加入核酸酶處理，需要工藝摸索來確認處理方式。河南SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-160