BLESS：利用生物素標簽對DSBs進行原位標記，后經PCR擴增實現(xiàn)對于生物素標記片段的富集，并通過二代測序實現(xiàn)脫靶位點檢測。直接檢測細胞中的切割位點，靈敏度與細胞、組織密切相關。LAM-HTGTS，片段化的gDNA經過LAM-PCR引入接頭，然后進行全基因組易位測序。高通量的全基因組范圍檢測，可準確檢測DSBs引發(fā)的重排。GUIDE-Seq，將dsODN    s標簽整合到DSBs位點，通過二代測序檢測這些標簽所在的基因組區(qū)域，從而確定脫靶突變的位置。廣使用的細胞內檢測方法。能檢測低頻脫靶突變。Digenome-Seq，片段化的gDNA與CRISPR/RNP混合孵育，進行全基因組測序檢測脫靶。全基因組測序，直接檢測切割位點，能檢測低頻脫靶突變。脫靶檢測實驗室，推薦唯可生物，實驗實力強，專業(yè)性高，檢測效率高，結果準確率高。杭州高精度脫靶檢測報告

改進Cas變體使用SpCas9和SaCas9 變體：已研發(fā)出諸如SpCas9-Nickase、dCas9 、dCas9–FokI、xCas9、Cas9-NG、evoCas9、SpCas9 – HFI、eSpCas9和Hypa-Cas9等多種Cas變體，可降低脫靶效應。改進的Cas9同源物具有更廣的PAM功能和特異性：實驗表明Cpf1、CRISPR-Cpf1-RNP可降低脫靶效應。CRISPR 遞送方法：基于病毒的遞送方法：腺病毒 (AdV) 顯示出整合到靶細胞基因組中的微弱潛力，這一特征有利于限制脫靶效應。然而，AdVs 會引發(fā)免疫反應，目前還不能完全排除它與宿主基因組整合的可能性。非病毒遞送方法：當sgRNA和Cas9以RNP復合物形式傳遞時，電穿孔顯示植物原生質體中的脫靶突變數(shù)量很低。通過脂質體介導的轉染傳遞RNP復合物顯示，與質粒DNA轉染相比，脫靶突變的發(fā)生率較小。寧波基因編輯脫靶檢測安評基因療法脫靶檢測，推薦唯可生物，實驗實力強，專業(yè)性高，檢測效率高，結果準確率高。

基因zhiliao產品特有的可能會引起遲發(fā)性不良反應的風險因素包括：基因組整合活性基因zhiliao產品可能會采用修飾宿主基因組的技術，并有可能在宿主細胞或組織中持續(xù)存在。很多基因zhiliao載體的基因整合不會指向基因組的特定位點，可能在整合位點處產生插入突變、或jihuo整合位點附近的原基因等，進而破壞重要基因功能或增加惡性liu的風險，例如，國外已有多項研究報告在接受了使用γ-逆轉錄病毒載體轉導的基因修飾細胞zhiliao的受試者中發(fā)生白血病。因此，對于存在此類風險的產品，有必要進行長期隨訪臨床研究以評估出現(xiàn)遲發(fā)不良反應的風險。

CAR或TCR修飾的免疫細胞對于嵌合抗原受體（Chimericantigenreceptor，CAR）或T細胞受體（Tcellreceptor，TCR）修飾的免疫細胞，應盡可能采用多種方法評估其靶點相關毒性和脫靶毒性風險。對于靶點相關毒性，應采用體外方法深入分析靶點在人體qiguan、組織和細胞中的表達分布情況，基因表達分析庫和文獻調研也可能會有助于闡明靶點在不同病理生理狀態(tài)下的表達是否存在差異。應采用表達和不表達靶抗原的細胞作為靶細胞進行體外試驗，確認CAR或TCR修飾的免疫細胞可特異性的識別和殺傷靶細胞。對于CAR修飾的免疫細胞，應采用多種體外方法評估其胞外抗原識別區(qū)的脫靶風險。基因編輯治療過程中安全性評價，即脫靶效應的檢測。

CIRCLE-seq和CHANGE-seq與SITE-seq同期發(fā)表的CIRCLE-seq一定程度上解決了SITE-seq的一些問題。CIRCLE-seq的第一步是將純化后的基因組DNA隨機打斷成300bp左右的片段，然后首尾相連成環(huán)狀DNA，這種方法很好地避免了DNA隨機斷裂造成的背景噪聲。實驗的第二步是用Cas9切割環(huán)狀DNA，再連上接頭并進行雙端測序，這樣就可以在一次測序中同時獲取切割位點的兩側序列，彌補了SITE-seq的另一個缺點。CIRCLE-seq從總體上來說要優(yōu)于SITE-seq，但是將基因組DNA隨機打斷后成環(huán)的效率并不高，所以同一作者在3年后發(fā)表了CHANGE-seq，用Tn5一步法打斷基因組并加接頭，提高了成環(huán)效率，降低了起始基因組DNA的用量。高精度脫靶檢測，推薦唯可生物，實驗實力強，專業(yè)性高，檢測效率高，結果準確率高。蘇州種子脫靶檢測評估

可以與靶基因之外的其他基因作用而非特異性阻斷基因表達,即產生非靶基因的沉默效應。杭州高精度脫靶檢測報告

基于已有科學經驗和既往非臨床/臨床研究結果，如果認為基因修飾細胞所采用的載體系統(tǒng)可將外源基因整合到細胞基因組中并可在體內長期存續(xù)，需綜合分析以上風險因素，評估潛在的插入突變、致瘤/致性風險。非臨床研究，應采用具有代表性的基因轉導細胞進行基因整合位點分析，分析細胞的克隆組成以及在關注基因（如liu相關調控基因）附近有無優(yōu)先整合跡象，含有關注整合位點的細胞有無優(yōu)先異常增殖。對于嵌合抗原受體（Chimericantigenreceptor，CAR）或T細胞受體（Tcellreceptor，TCR）修飾的免疫細胞，應盡可能采用多種方法評估其靶點相關毒性和脫靶毒性風險。杭州高精度脫靶檢測報告