采用基因編輯技術制備的細胞產品。對于采用基因編輯技術制備的基因修飾細胞產品，應進行體外在靶和脫靶活性評估，以確認修飾酶或向導RNA對靶基因序列的特異性。在評估基因編輯的脫靶風險時，應說明所選擇的評價策略的合理性和敏感性。雖然采用計算機分析預測基因編輯的潛在脫靶位點，并對潛在脫靶位點進行深度測序分析，可用于評估基因編輯的脫靶風險；但選擇的評價策略仍應包含體外全基因組測序比對，以證明潛在脫靶位點未出現脫靶。此外，在評估脫靶活性時，還應評估種屬特異性的差異、細胞病理生理狀態的差異或細胞類型的差異對非臨床數據預測性的影響。必要時，還應分析基因編輯對細胞表型和生理功能的潛在影響。脫靶檢測方法，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。武漢off-target脫靶檢測報告

CRISPR基因編輯zhiliao發展如火如荼，但也有不少人對基因zhiliao的安全性提出擔憂，由于CRISPR技術是直接改變基因組DNA，其中任何的改變都會被長久保留下來，所以CRISPR對于DNA序列的任何改變都需要嚴謹的安全評估。根據目前已經公開的FDA關于基因zhiliao的指導文件，對于基因zhiliao安全性的評估可以簡單總結為兩個方面：由于目前大部分CRISPR基因編輯zhiliao方案是基于CRISPR引起的DNA雙鏈斷裂和隨機突變進行基因敲除，所以一類風險主要是指靶位點的隨機突變引發的安全風險，如果出現大片段丟失、染色體重排等異常變化，都存在巨大的安全隱患。寧波crispr脫靶檢測企業基因編輯治療過程中安全性評價，即脫靶效應的檢測。

圍繞大家關心的CRISPR基因編輯安全性問題，我們首先對CRISPR脫靶位點檢測技術進行一次大盤點，在sgRNA設計階段需要如何做才能夠盡可能地避免脫靶現象的發生。較簡單的脫靶位點檢測方法是全基因組測序（WGS），但在實際使用中，即使測序深度達到100X，也很難發現一些低頻率的脫靶位點，同時測序成本卻非常高。為彌補WGS的這些缺陷，常見的脫靶位點檢測技術都需要對脫靶位點進行捕獲富集，來提高檢測靈敏度，降低測序成本。按照實驗原理的不同，脫靶位點檢測技術可以分為細胞外、細胞內和其他特殊方法這3類。

臨床研究人群，如果一種基因zhiliao產品具有引起遲發性不良反應的風險，需要開展長期隨訪觀察時，所有接受基因zhiliao產品的受試者在簽署知情同意書后均應入組長期隨訪臨床研究。在設計長期隨訪臨床研究的方案時，應考慮目標受試者人群及特征、整體健康情況以及接受zhiliao的患者的預期生存期等特征對遲發性不良反應的收集的影響。通常來說，當臨床研究人群的某些特征（如預期壽命短、多重合并癥、以及暴露于放療或化療等其他藥物）可能干擾遲發性不良反應的觀察分析時，會影響長期隨訪觀察在評估和減輕受試者風險方面的效用；而在病情較輕或較局限，合并癥以及伴隨zhiliao有限或較穩定的受試者中，通過長期隨訪觀察收集到的評估數據可能更容易分析。脫靶檢測政策，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。

CIRCLE-seq和CHANGE-seq與SITE-seq同期發表的CIRCLE-seq一定程度上解決了SITE-seq的一些問題。CIRCLE-seq的第一步是將純化后的基因組DNA隨機打斷成300bp左右的片段，然后首尾相連成環狀DNA，這種方法很好地避免了DNA隨機斷裂造成的背景噪聲。實驗的第二步是用Cas9切割環狀DNA，再連上接頭并進行雙端測序，這樣就可以在一次測序中同時獲取切割位點的兩側序列，彌補了SITE-seq的另一個缺點。CIRCLE-seq從總體上來說要優于SITE-seq，但是將基因組DNA隨機打斷后成環的效率并不高，所以同一作者在3年后發表了CHANGE-seq，用Tn5一步法打斷基因組并加接頭，提高了成環效率，降低了起始基因組DNA的用量。脫靶檢測報告，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。江蘇基因編輯技術脫靶檢測分析

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但是由于CHIP-seq實驗本身的難度較高，DISCOVER-seq這類方法的接受度并不高。3. 其他特殊方法CRISPR技術經過這么多年的發展，其應用已經不局限于造成DNA雙鏈斷裂，一些不要切割DNA雙鏈的CRISPR衍生技術（如堿基編輯、先導編輯和CRISPRi/a），可以在不引發隨機突變的情況下，對基因組進行精細編輯或者調控。這些技術所使用nCas9或dCas9只結合或者切割雙鏈中的一條鏈，之前的脫靶檢測方法都不能直接適用。這些CRISPR衍生技術中，CRISPR產生的脫靶可以被細分為兩個部分，其一是Cas9/sgRNA結合DNA導致的脫靶，這部分信息使用同樣序列的sgRNA進行野生型Cas9脫靶位點檢測能夠間接得到武漢off-target脫靶檢測報告