脫靶來自于這些技術所攜帶的功能基團，如堿基編輯的脫氨酶和先導編輯的逆轉錄酶，不依賴sgRNA結合基因組DNA的情況下產生的脫靶。為檢測第二類脫靶現象，研究者需要針對每種技術設計專門的檢測方法。1) R-loop seq在堿基編輯開發早期，雖然靶位點的編輯效率很高，但研究者也很快發現脫氨酶會在游離的時候隨機修飾暴露的DNA單鏈，導致大量的脫靶位點。為降低這類脫靶現象的發生，研究者設計了R-loop seq，以dSaCas9結合DNA形成R-loop，暴露出DNA單鏈，為堿基編輯的脫氨酶提供一個固定的脫靶位點，然后以該位點的編輯效率反映堿基編輯脫氨酶的脫靶程度。選擇潛在的脫靶位點，例如選擇gRNA預測網站上Top 5潛在脫靶位點，進行Sanger測序單克隆；武漢育種脫靶檢測服務

近幾年，細胞和基因zhiliao（cell & gene therapy，CGT）領域發展迅猛，在多個方向取得了重大突破，以anti-CD19和BCMA為代的多種CAR-T免疫細胞療法攻克了一部分血液瘤，多種AAV療法也給一些難以成藥的罕見病提供了有效的zhiliao方案。另一方面，基于CRISPR基因編輯技術的眾多基因療法也進展迅速，較早體外基因編輯療法較快今年年底能夠上市（CRISPR Therapeutics CTX001），體內基因編輯療法取得了不錯的臨床數據（Intellia Therapeutics NTLA-2001），使用CRISPR技術制造的通用型CAR-T療法也是免疫細胞療法發展的一大趨勢（Caribou Biosciences CB-010）。廣州種子基因脫靶檢測方法脫靶檢測CRO，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。

CRISPR/Cas系統是細菌和古細菌在不斷進化的過程中產生的適應性免疫防御機制，它應用CRISPR RNA（crRNA）以堿基互補的形式引導相應的Cas蛋白識別入侵的外源基因組，并對其DNA進行剪切，用以保護自身的基因組免受外源核酸如噬菌體、病毒等的干擾和破壞。經過人為改造后，可在真核細胞中實現高度靈活且特異的基因組編輯，通過設計特異性向導RNA(Single guide RNA, sgRNA)序列與靶序列進行堿基配對，從而引導Cas蛋白結合到靶序列處，行使DNA切割功能，然后利用細胞的非同源性末端連接(Non-homologous end joining, NHEJ)或同源重組(Homologous recombination,HR)修復機制對斷裂的DNA進行插入缺失(Indel)、修復(Repair)或替換(Replacement)。由于其相對于鋅指核酸酶(ZFNs)和轉錄jihuo因子樣效應物核酸酶(TALENs)技術更易于操作，而且更高效，因而被廣運用于對基因組特定位點進行靶向編輯。

R-loop seq雖然不是一種真正意義上的脫靶位點檢測方法，但能為堿基編輯脫氨酶的脫靶提供一種度量方法，以便于之后的脫氨酶點突變優化，來降低脫靶的發生幾率。2) Detect-seqCRISPR衍生技術由于其復雜性，檢測其脫靶位點的hexin思路是捕獲實驗過程中的關鍵中間產物或者終產物。這種設計思路下，目前較為成功的是檢測堿基編輯CBE脫靶位點的Detect-seq[13]。CBE的原理是將dC脫氨變為dU，迫使其對側的dG變為dA，較終將堿基對從C-G轉變為T-A。Detect-seq便是針對中間態的dU，使用Uracil DNA Glycosylase (UDG)，去除U堿基后，替換為帶Biotin的U堿基，捕獲堿基編輯的脫靶位點，并且sgRNA依賴和sgRNA不依賴的脫靶位點都能找到。該方法類似檢測DNA甲基化的重亞硫酸鹽測序法，通過處理特定的堿基，可以捕獲全基因組上的CBE脫靶位點。種子基因脫靶檢測機構推薦唯可。

改進Cas變體使用SpCas9和SaCas9 變體：已研發出諸如SpCas9-Nickase、dCas9 、dCas9–FokI、xCas9、Cas9-NG、evoCas9、SpCas9 – HFI、eSpCas9和Hypa-Cas9等多種Cas變體，可降低脫靶效應。改進的Cas9同源物具有更廣的PAM功能和特異性：實驗表明Cpf1、CRISPR-Cpf1-RNP可降低脫靶效應。CRISPR 遞送方法：基于病毒的遞送方法：腺病毒 (AdV) 顯示出整合到靶細胞基因組中的微弱潛力，這一特征有利于限制脫靶效應。然而，AdVs 會引發免疫反應，目前還不能完全排除它與宿主基因組整合的可能性。非病毒遞送方法：當sgRNA和Cas9以RNP復合物形式傳遞時，電穿孔顯示植物原生質體中的脫靶突變數量很低。通過脂質體介導的轉染傳遞RNP復合物顯示，與質粒DNA轉染相比，脫靶突變的發生率較小。脫靶檢測報告，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。廣州crispr/cas9脫靶檢測安評

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TCR修飾免疫細胞的脫靶毒性可通過評估TCR與人體自身抗原肽的交叉識別能力來評估。首先，應采用體外試驗測定TCR修飾的免疫細胞與人自身抗原肽-HLA（與遞呈靶抗原肽的HLA等位基因相同）復合物的親和力，并說明抗原肽的選擇依據及選擇范圍。此外，還應研究其他相關或不相關的蛋白中是否含有靶抗原肽序列。如果TCR與人自身抗原肽有交叉反應可能，應確定靶抗原肽的較小識別基序（motif），并采用計算機預測分析評估交叉反應性。如果計算機預測可識別出具有潛在交叉反應性的抗原肽，應在體外測定TCR修飾免疫細胞對表達相應蛋白或遞呈相應抗原肽的的細胞的識別能力。如果不能排除交叉反應性，應基于含有潛在交叉反應性抗原肽的蛋白的表達模式以及TCR與潛在交叉反應性抗原肽的親和力來進行風險評估。為獲得TCR與其他等位HLA潛在交叉反應性的信息，應進行充分的HLA交叉反應性篩選。對于TCR修飾的T細胞，還應關注引入TCR鏈和內源性TCR之間的錯配可能性，應描述和說明旨在降低錯配可能性的TCR設計策略。武漢育種脫靶檢測服務